一招高效解析基因功能:基因敲除细胞混合克隆(KO Pool)技术

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一招高效解析基因功能:基因敲除细胞混合克隆(KO Pool)技术

发布日期:2025年06月25日
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一招高效解析基因功能:基因敲除细胞混合克隆(KO Pool)技术

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RISPR/Cas9系统作为一项革命性的基因组编辑技术,已经在基础研究和应用开发中引发巨大变革。尤其在功能基因组学领域,CRISPR技术已逐渐取代传统RNA干扰(RNAi)方法,成为研究基因功能的标准工具之一。其中,基因敲除细胞混合克隆(Knockout Pool, KO pool)策略因其高效、快速、低成本的优势,在高通量筛选和功能验证中显示出广泛的应用前景。

KO Pool 简介:高效快捷的功能基因研究平台

KO pool的优势包括:

1.避免单克隆挑选,显著节省时间和成本

2.敲除效率高,可直接用于功能测定

3.在短时间内获得生物学表型响应

4.在特定应用中可提供比RNAi更彻底、稳定的敲除效果

KO pool关键应用领域

高质量KO pool适用于多种生物医学研究,特别是在以下方向显示出卓越性能:

1.细胞增殖与存活测定
快速评估基因敲除对细胞生长动力学的影响。

2.功能基因发现与通路解析
高通量筛选关键基因,例如识别癌症驱动因子或疾病易感基因。

3.药物反应性与靶标验证
通过KO pool快速筛查潜在靶标,指导新药开发。

4.疾病模型构建
在原代或诱导多能干细胞中敲除相关基因,模拟疾病状态。

5.抗体验证与蛋白质功能研究
精确定义蛋白敲除状态,验证抗体特异性与下游表型。

CRISPR-U™ 技术平台:KO Pool 构建的高效解决方案

源井生物自主研发的CRISPR-U™基因编辑平台,基于CRISPR/Cas9系统,专为细胞系的高效编辑和KO pool构建而优化。该系统融合了多个创新技术模块,包括:

1.靶向设计算法优化:根据细胞系特异的基因组结构与转录图谱,精准设计gRNA,提升打靶效率。

2.双gRNA协同策略:利用两个相邻(40–300 bp)位点的gRNA协同作用,提高双链断裂效率,增强基因敲除彻底性。

3.无偏差检测系统:通过高通量分子组学手段(如qPCR、NGS、MS)准确评估编辑效率与敲除效果。

4.细胞编辑流程标准化:适配数百种常见及难转染细胞系,建立编辑参数数据库,提升编辑效率10–20倍。

5.单细胞微量基因型识别:5.用于下游功能验证或单克隆选育时提供基因型参考。

定制CRISPR-U™ KO pool的工作流程
图1: 定制CRISPR-U™ KO pool的工作流程

源井生物开发的CRISPR-U™优化细胞的基因编辑。其效率和准确性高于传统方法。请立即联系我们了解与您的研究相关的服务吧!

案例研究:PDXK 基因敲除的KO Pool 与单克隆比较分析

在一项针对HepG2细胞系中吡哆醛激酶(PDXK)基因的研究中,研究团队采用双gRNA协同敲除策略,成功构建了PDXK-KO pool,并与3个独立单克隆PDXK-KO细胞系进行了比较。

蛋白质组学结果显示:

  • · KO pool的重复性更高(标准差更低,图1A所示)
  • · KO pool中共鉴定出6个显著下调的蛋白质,而单克隆中仅发现4个
  • · KO pool更接近群体平均生物学响应,适合早期筛选与系统性评估

注意事项:

尽管KO pool用于短期功能评估非常有效,但在某些情形(如需长期培养、研究单个克隆突变背景)下,仍需构建稳定的单克隆系。此外,必须使用MS等手段确认是否存在截短蛋白或外显子跳跃表达,以避免误判敲除效率。

PDXK-KO细胞的蛋白质组学表型
图2: PDXK-KO细胞的蛋白质组学表型

总结:KO Pool 是RNAi的理想替代方案

CRISPR-U™ KO pool技术通过在群体水平高效敲除目标基因,为基因功能探索提供了一个高通量、成本可控、操作简便的新平台。相较RNAi,其在稳定性、特异性和生物学相关性方面均具有显著优势,适用于从早期靶点发现到功能验证的多个研究阶段。如需进一步了解如何将CRISPR-U™ KO pool系统应用于您的科研项目,请即刻联系源井生物,为您的项目提供专属的基因编辑解决方案。

点击阅读:RNAi和CRISPR,到底谁才是基因研究的“首选工具”?

Reference:

A Tandem Guide RNA-Based Strategy for Efficient CRISPR Gene Editing of Cell Populations with Low Heterogeneity of Edited Alleles. CRISPR J.2020;3(2):123-134.

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基于CRISPR-U™专利技术,源井生物根据不同细胞特点选择适宜的转染方法(电转法或病毒法),将gRNA和Cas9转入细胞中,然后进行单克隆筛选,通过靶位点扩增及测序验证筛选出成功敲除的阳性克隆,最终交付纯合子细胞株与相关数据报告。
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