干货丨GL261细胞培养和基因编辑Tips

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干货丨GL261细胞培养和基因编辑Tips

发布日期:2025年06月23日
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干货丨GL261细胞培养和基因编辑Tips

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作为源自C57BL/6小鼠的经典神经胶质瘤模型,GL261细胞凭借其免疫原性明确、可在免疫完整小鼠中建模的独特优势,已成为研究胶质母细胞瘤(GBM)免疫治疗、肿瘤微环境调控、放化疗敏感性联合治疗策略的黄金工具。

无论是深入探索 PD-1/PD-L1通路机制,评估CAR-T/NK细胞疗效,还是搭建CRISPR/Cas9功能筛选平台,GL261都能助你精准解析脑肿瘤免疫反应,推动科研高效突破!今天,小源就带你解锁GL261的使用秘籍——分享实用的细胞培养技巧高效实验策略,助你在神经肿瘤研究的道路上,一路高分、稳步前行!

细胞信息

细胞名称:GL261(小鼠胶质细胞瘤)

生长特性:贴壁生长

细胞形态:上皮样,贴壁细胞

细胞培养条件:90%DMEM+10%FBS;

气相:空气,95%;CO2,5%;

温度:37℃

换液频次:2-3天换液一次

传代比例:1:2-1:3

细胞生长正常图片:细胞贴壁,轮廓清晰,细胞边缘整齐。培养过程中细胞间无大量碎片或者细胞分泌物。

图1. 基于hPSCs的疾病建模与药效评价应用[1]

细胞异常图片:少量贴壁细胞,细胞轮廓不够清晰。培养过程中有大量的细胞分泌物和细胞碎片。

图1. 基于hPSCs的疾病建模与药效评价应用[1]

细胞复苏

1)准备工作:预热水浴锅至37℃,预热完全培养基,准备好细胞;

2)在超净台内吸取 7 mL 已预热好的完全培养基至 15 mL 离心管中;

3)将细胞从干冰里取出,用镊子夹住盖子放入 37℃水浴中快速晃动(注意:水不能没过盖子),使其在 1 分钟左右完全融化;

4)用单道移液器将细胞悬液转移至步骤2)提前准备好的15ml离心管中,盖上盖子,离心1100 rpm 室温 4 分钟;

5)超净台内弃上清,吸取 1 mL 完全培养基重悬细胞至单细胞悬液,转移至装有 4 mL 完全培养基的 T25 cm2培养瓶 (或者 6cm 的皿) 中,写上细胞名称、复苏日期、 代次,放置 37℃、5% CO2培养箱中培养;

6)第二天观察细胞状态。

细胞传代(以T25瓶为例)

1) 当细胞长至80%-90%汇合度即可传代。在超净台内把培养瓶里的培养液倒至废液缸,用1×PBS(T25 cm2培养瓶添加约2~3mL,T75 cm2培养瓶约4~5 mL)洗涤细胞1~2次,以去除残余的培养液和血清(血清含有胰酶的抑制因子);

2) 加入相应体积的胰酶溶液,具体参考下表1,轻轻晃动瓶子并使胰酶完全浸过细胞,将培养瓶放入培养箱孵育1~2分钟,待在显微镜下观察到大部分细胞变圆不贴壁,轻轻晃动和敲击培养瓶两侧有大量细胞脱离时,立即终止消化;


培养物规格 胰酶体积
6孔板 0.5 mL
T25 1 mL
T75 2-3 mL
T175 3-4 mL

3) 加入2倍胰酶体积的完全培养液终止消化,并轻吹打细胞数次,使所有细胞彻底脱壁;注意:吹散细胞时注意要轻柔,尽量不产生气泡或尽可能产生少量气泡。

4) 用10 mL移液管转移细胞悬液到一支50 mL离心管中,同一批次的细胞可以合并收集在一起,视情况用适量 PBS将培养瓶里的残余细胞洗下来,一起加到50mL离心管中。盖上盖子,做好标记;

5) 1100 rpm室温离心4分钟,离心后,打开盖子弃上清,加2mL完全培养基重悬细胞;

6) 细胞按照一定的接种比例传代,首次按照1:2进行传代,若细胞在两天内长满可增加传代比例。

细胞冻存

1) 将培养瓶里的细胞悬液全部转移至离心管中;

2) 1100rpm离心4min,离心结束弃去上清,加入适量4℃预冷的冻存液重悬细胞,然后吸取20μL细胞悬液进行细胞计数,并调整细胞密度为5*10^6~1*10^7个细胞/mL;

3) 按 1 mL/管分装至冻存管中,将冻存管放置于冻存盒中然后转移至-80℃冰箱;

4) 过夜后,将冻存细胞转移至液氮罐内保存。

培养过程中细胞碎片、细胞分泌物过多或者药筛后死细胞过多

1) 若培养过程中死细胞过多,可以通过勤换液(隔天或者每天换液),且用优质的澳胎血清。

2) 若培养过程中细胞分泌物、细胞碎片过多;可以将细胞消化下来,终止消化后用PBS洗涤细胞团,重悬后将细胞悬液转移至1.5ml EP管中离心(1100rpm离心4min),离心结束尽可能的吸干净PBS,可重复此步骤两次,根据离心下来的细胞量接种至合适的培养容器中。

冻存复苏活率低(存活率低)

GL261细胞容易受到冻存的影响,为了提高复苏时细胞存活率需要在冻存时加大冻存密度,一般建议冻存时细胞密度为1*10^6-2*10^6。在复苏时可先把细胞复苏至1-2个6孔,待细胞恢复状态后再转移至更大表面积的培养瓶中培养。

如何提高单克隆形成率

1.铺克隆时细胞活率需要>90%

2.稀释细胞计数后结果最好落在1*10^6-2*10^6之间

3.铺克隆时建议使用优质澳洲胎牛血清

4.铺克隆时建议用PBS清洗细胞团两次

5.可先进行预实验找到合适的铺克隆梯度,避免单克隆占比太低

6.细胞接种96孔板时需确保细胞分布均匀

细胞转染时注意事项

1.细胞活率>90%,细胞状态正常,细胞轮廓清晰,细胞边缘整齐

2.转染过程中操作需轻柔

3.选择电穿孔法进行实验时需选择合适的电转参数,避免参数不合适导致转染后大量细胞死亡

4.病毒感染法进行正式实验前建议进行预实验找到最适MOI及最佳药筛浓度;确保感染的病毒滴度达标;感染前添加助染剂Polybrene;感染时建议12孔板内进行

注意事项

1.GL261细胞在冻存时细胞活率建议大于90%,每管冻存细胞量控制在5*10^6-1*10^7/ml

2.GL261细胞在生长过程中会有细胞分泌物和细胞碎片产生,建议每隔一代传代的时候,用PBS洗涤细胞团,以减少细胞分泌物和细胞碎片对细胞增值、细胞状态的影响。

3.GL261细胞有密度依赖,传代比例不宜过大,建议是1:2-1:3。

4.GL261细胞对机械力较敏感。正常培养时,可轻柔吹打细胞,尽量避免吹打力度过大而导致细胞分化和造成细胞死亡

5.培养时控制好细胞密度,培养、传代时让细胞处于一个合适的密度范围

6.GL261细胞对胎牛血清质量比较敏感,建议使用优质澳洲胎牛血清

电转图:

图1. 基于hPSCs的疾病建模与药效评价应用[1]

慢病毒感染图:

图1. 基于hPSCs的疾病建模与药效评价应用[1]

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