基因敲除细胞的应用

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发布日期:2021年03月19日
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基因敲除细胞的应用


基因敲除细胞的应用

CRISPR(Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats)是指细菌和古细菌DNA中的一系列重复模式,这种模式是原始免疫系统的基础,细菌通过在CRISPR模式中整合病毒的DNA序列来“记住”系统入侵者——病毒的DNA。然后Cas蛋白能够识别存储在CRISPR模式内的DNA序列,并切割具有匹配序列的任何DNA分子。自2012年以来,CRISPR/Cas系统被开发成易于使用且功能强大的基因组编辑工具,可用于基础研究和临床。
目前有三种常用的策略来使用CRISPR/Cas9系统进行基因组编辑:

(1) 质粒法:在体外将Cas9基因以及gRNA组装到同一质粒中,然后用质粒转染细胞。然而质粒需要进入到靶细胞的核内才能发挥作用,这是该方法主要的限制性;

(2) Cas9 mRNA和gRNA转染细胞:这种方法最大的缺点在于mRNA的稳定性差,这导致mRNA的瞬时表达和基因修饰的持续时间很短;

(3) RNP法:直接转染Cas9蛋白和gRNA。具有作用快,稳定性好,抗原性有限等优点。

在各种CRISPR系统中,CRISPR/Cas9是使用最广泛使用系统,它广泛应用于研究基因功能。它加快了各类基因敲除细胞系的产生和应用。

基因敲除细胞的应用:


破译海量的遗传信息是一个巨大的挑战。如今,确定基因的作用、了解基本生物学、把基因突变与疾病发病机制联系起来,CRISPR/Cas9使这些复杂的研究变得简单。基因敲除(KO)细胞系是CRISPR/Cas9介导基因编辑中最典型的应用。以下是KO细胞系的潜在应用:


1、 抗体特异性验证

2、 确定参与通路的基因

3、确定药物靶点

4、建立疾病模型

5、开发治疗工具


1.抗体特异性验证


科研圈认为,一个优秀的科研工具对研究的质量有着重大影响。抗体是生命科学研究中最常用的试剂之一,尽管其用途广泛,但目前并没有标准的检验方法对抗体进行特异性验证。例如,未被验证的抗体有可能会产生非特异性结果,导致结果无法复制。有人呼吁使用KO细胞系验证抗体特异性,并应将其制定为抗体的行业标准。野生型和KO细胞系的平行验证,是控制科研试剂的质量的有效工具。


2. 确定参与通路的基因


一条信号通路中,通常存在多个相关但不同的分子和过程。基因编辑的细胞系可以来验证特定基因或突变的作用。例如,JAK1对于某些细胞因子的信号传导是必需的,并且被认为在肿瘤转移中起关键作用。它也被认为与INFγ受体有功能及物理上的联系。当配体与受体结合时,与受体相关的JAK被激活,导致特异性STATs(信号转导子和转录激活子)在细胞质中募集,然后这些STATs就成为了JAK的底物。活化的STATs从受体中释放出来,转移到细胞核中与特定的增强子元件结合,从而影响目标基因的表达。通过敲除JAK1基因可以验证JAK1在STAT磷酸化中的作用,在KO细胞系中STAT没有被磷酸化,这可以通过westernblot来验证。


3. 确定药物靶点


研究通路中各个基因的作用通常会用药理学干预的方法。例如,化疗6-硫鸟嘌呤(6-TG)用于检测DNA损伤反应(DDR)的影响。为了保持基因组完整性,细胞有许多机制,每种机制都是针对不同类型的损伤而特定的。这些DDR通路的效率对细胞毒素治疗的有效性起着至关重要的作用。6-TG是一种生长抑制性抗代谢物质,需要一个活性DNA错配修复(MMR)系统才能起作用。一项研究表明,HPRT+细胞对6-硫鸟嘌呤(6-TG)敏感,HPRT可转化为核苷酸形式,并通过DNA聚合酶将其整合到DNA中,通过复制后错配修复过程杀死细胞。这个策略是通过用两种质粒转染细胞,分别表达HPRT的gRNA和一个相关基因的gRNA。Cas9可以装载在质粒上(例如携带HPRT gRNA的质粒)或整合到染色体上(例如Cas9稳转细胞株)。如果一个细胞对6-TG产生抗性,只要gRNA有效,就可以在这个细胞中打靶感兴趣的基因。因此,如果靶基因在6-TG耐药细胞中没有改变,这就表明gRNA无效。另一方面,如果通过联合打靶却获得不到6-TG耐药细胞,则表明目的基因可能是必需的。因此,KO细胞系可以用来确定6-TG的靶点。


4.建立疾病模型


在患者中确定感兴趣的突变后,下一步是探索导致疾病表型或治疗效果的生物学机制。例如在患者群体中观察到的点突变,通过在KO细胞中回补正常的基因,可以起到修复基因突变以恢复表型的作用。其中一个疾病模型的例子是MAGEC2敲除黑色素瘤细胞系。MAGEC2是Ⅰ型黑色素瘤相关抗原家族的一员,在多种癌症类型中表达,但在正常体细胞中不表达。研究人员利用CRISPR/Cas9技术,在A375黑色素瘤细胞系中敲除MAGEC2基因。他们发现MAGEC2基因的敲除使黑色素瘤细胞对肿瘤坏死因子-α诱导的凋亡敏感。这些研究揭示了MAGEC2促进肿瘤发展。


早期的研究报道指出核因子红细胞2相关因子(NRF2)是100-200个基因的主要调节因子,参与细胞对氧化和/或亲电应激反应。NRF2还可以调节参与蛋白质降解和解毒的基因的表达,并且被杯状ECH相关蛋白1(KEAP1)负调控,KEAP1是依赖Cul3的E3泛素连接酶复合物的底物适配物。一个研究小组使用CRISPR/Cas9系统,通过破坏NRF2核输出信号(NES)结构域来抑制肺癌细胞中的NRF2基因表达;表型上,这种蛋白质在翻译后基本上被阻断了向细胞核的传递。研究发现,这个NRF2基因敲除细胞增殖能力降低,对顺铂和卡铂等化疗药物更为敏感。他们还发现,即使没有药物治疗,纯合基因敲除细胞的增殖速度也比野生型细胞慢。


5. 开发治疗工具


在过去的几年中,以中国和美国为代表的团队进行了一系列基因编辑的临床试验,例如产生更有效的治疗癌症的CAR-T细胞,敲除BCL11A的红系特异性增强子从而上调自体红系HSC中的γ球蛋白,可作为镰刀状细胞病和β-地中海贫血的潜在治疗方法。到目前为止,已经有一些正在进行临床试验的案例,利用敲除自体T细胞的PD-1基因的方法来治疗癌症,包括前列腺癌(NCT02867345)、食管癌(NCT03081715)和肾细胞癌(NCT02867332)。这些试验被认为是将体外CRISPR/Cas9基因敲除技术应用于癌症治疗的概念验证研究。


总之,KO细胞系是一个多功能的工具,有助于我们了解基本生物学,以及确定突变在疾病发病机制中的作用。进一步地,促进了疾病治疗和病人的预后。

CRISPR-U™是源井生物自主研发的基因编辑技术(基于CRISPR / Cas9技术),CRISPR-U™技术比普通CRISPR/Cas9技术的基因切割效率更高,同时可以大幅度提升同源重组效率,轻松实现细胞和动物水平的基因敲除(KO)、基因点突变(PM)和基因敲入(KI)。利用CRISPR-U™的技术优势,源井生物已成功在超过200种细胞系上实现基因编辑。



Reference::

Enriching CRISPR-Cas9 targeted cells by co-targeting the HPRT gene. Nucleic Acids Res. 2015. 43(20): e134.

Establishment of MAGEC2-knockout cells and functional investigation of MAGEC2 in tumor cells. Cancer Sci 2016. 107(12):1888-1897.

Functional Gene Knockout of NRF2 Increases Chemosensitivity of Human Lung Cancer A549 Cells In Vitro and in a Xenograft Mouse Model. Molecular Therapy: Oncolytics. 2018 11:75-89.

Applications of genome editing technology in the targeted therapy of human diseases: mechanisms, advances and prospects. Signal Transduct Target Ther .2020 Jan 3;5(1):1.

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