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IF=18.7 | 源井PPARA基因敲除细胞助力夯实10-HSA 改善HIV肠道免疫的分子证据

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IF=18.7 | 源井PPARA基因敲除细胞助力夯实10-HSA 改善HIV肠道免疫的分子证据
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发布日期: 2026年09月29日

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HIV/SIV 感染会快速破坏肠道上皮屏障、耗竭黏膜 CD4⁺ T 细胞、诱发持续慢性炎症,肠道菌群紊乱是疾病进展核心诱因;传统 ART 仅抑制病毒复制,无法修复肠道黏膜损伤。本研究从植物乳杆菌代谢产物中筛选出 10-HSA,完整解析 菌群10-HSA-PPARα-组蛋白巴豆酰化 调控轴,证实 10-HSA 直接激活 PPARα,修复线粒体与肠道屏障;非人灵长类模型证实 10-HSA 联合 ART(ACT)可快速控毒、重塑肠道稳态,人体活检样本验证通路临床保守性,为 HIV 黏膜损伤提供全新代谢干预策略。当前领域多聚焦短链脂肪酸,本研究首次系统阐明微生物长链羟基脂肪酸调控肠道免疫的分子机制,填补该领域研究空白。

源井生物为本研究提供 PPARA 基因敲除 HCT 116 细胞 (货号 #YKO-H592) ,用作体外机制验证的核心细胞工具。

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研究路线

  • 1.代谢物筛选与体外验证: 筛选得到菌群代谢物 10-HSA,结构与细胞实验证实其靶向 PPARα、修复受损肠道屏障。
  • 2.PPARα 必要性验证: 敲除细胞 + 抑制剂双重实验,确认 10-HSA 保护功能完全依赖 PPARα 通路。
  • 3.单药动物实验: SIV 恒河猴单独给药,证实 10-HSA 可修复肠道、线粒体并优化肠道菌群。
  • 4.联合疗法验证: 对比单用 ART,ART+10-HSA 联合方案可快速控毒、修复黏膜、抑制 HIV 潜伏激活。
  • 5.菌群调控解析: 多组测序证明 10-HSA 富集有益菌,上调 10-HSA 合成基因、抑制微生物促炎基因。
  • 6.表观机制研究: PPARα 驱动 H3K18 巴豆酰化修饰,靶向线粒体再生基因,缺失 PPARα 则该通路失效。
  • 7.临床样本佐证: 对比两类 HIV 患者肠道样本,证实 PPARα-巴豆酰化轴在人体内具备黏膜保护作用。

主要结果

1.10-HSA由植物乳杆菌产生,直接结合PPARα并体外修复肠道屏障

代谢组分析显示,植物乳杆菌定植 SIV 感染肠道后,10-HSA 是上调幅度最高的菌群代谢物;X 射线晶体学解析 2.1Å 复合物结构,明确 10-HSA 通过多组氢键结合 PPARα 配体结合域的激活关键氨基酸残基 ,分子动力学模拟验证结合稳定性;HIV 抗原 gp120+Tat 会破坏 Caco2 细胞 ZO-1 紧密连接、抑制线粒体呼吸、升高 ROS,添加 10-HSA 可显著恢复紧密连接连续性、回升细胞氧消耗速率、降低氧化应激水平;CCK8 细胞活力实验证明 10-HSA 无细胞毒性,屏障修复作用并非依靠提升细胞存活实现。

Figure 1

图1.通过微生物衍生的生物活性十八烷酸脂激活PPARα,修复肠道上皮屏障

2.PPARα是10-HSA发挥保护作用的必要靶点

荧光素酶报告实验证明 10-HSA 剂量依赖性激活 PPARα ,特异性抑制剂可完全阻断激活,且对 PPARγ 激活活性极低,靶点具有高度选择性;野生型 HCT116 细胞中 10-HSA 可恢复线粒体呼吸、上调紧密连接与脂代谢基因,PPARα 敲除细胞中该修复效应完全消失;PPARα 敲除细胞本底紧密连接结构紊乱,HIV 抗原刺激后损伤无法被 10-HSA 逆转,PPAR 抑制剂处理野生细胞也会废除 10-HSA 的线粒体保护功能。

Figure 2

图2.肠道上皮屏障修复通过PPARα介导的线粒体功能实现

3.单独10-HSA给药可修复SIV感染恒河猴肠道、线粒体与代谢稳态

免疫荧光显示 SIV 感染动物肠道 ZO-1 断裂、连续性下降,10-HSA 处理后紧密连接结构完整,血清肠道损伤标志物 IFABP 显著降低;透射电镜观察线粒体形态,结果显示SIV 组线粒体形态畸形、面积增大,10-HSA 处理恢复正常管状结构,线粒体钙颗粒、细胞间隙连接恢复至健康水平;肠道转录组显示 10-HSA 上调线粒体能量代谢 、PPARα、IL-22 黏膜防御通路, 抑制 NF-κB 炎症信号 ;血清代谢组检测证实肠功能、线粒体相关代谢物水平显著改善。

Figure 3

图3.经10-HSA治疗后,SIV感染模型中肠道上皮屏障及线粒体生物能量功能均实现体内修复

4.ACT联合疗法可加速病毒抑制、重建肠道黏膜免疫

病毒载量监测结果显示,ACT 组给药 1 周内病毒快速下降,病毒衰减速率显著优于单一 ART 治疗组;对肠道黏膜淋巴细胞检测后发现,ACT 可早期恢复结肠 CD4⁺ T 细胞,降低活化型 CD4⁺比例,减轻黏膜过度炎症;J-Lat HIV 潜伏细胞实验证实 10-HSA 通过激活 PPARα 抑制 NF-κB,显著阻断 HIV LTR 启动子激活, 抑制潜伏病毒转录 ;黏膜转录组差异分析结果显示,ACT 特异性上调脂代谢、PPARα 通路,显著下调干扰素炎症与 DNA 损伤应答通路,单一 ART 无此转录重塑效果。

Figure 4

图4.在SIV病毒感染的体内模型中,联合应用抗逆转录病毒治疗(ART)与10-HSA治疗可加速病毒抑制

5.10-HSA重塑SIV紊乱的肠道微生物群落

16S 测序菌群多样性分析显示,SIV 感染降低肠道 α 多样性,10-HSA 单独给药、ACT 联合给药均可显著提升菌群多样性;SIV 感染动物富集致病性变形菌门,10-HSA 处理后厚壁菌门乳杆菌、Blautia 等有益菌丰度大幅升高;宏基因组测序结果表示,10-HSA 上调油酸水合酶 OhyA(10-HSA 合成关键基因),下调硝酸盐还原酶、磷脂酶 D 等促炎微生物编码基因;ACT 对比单一 ART显示,ACT 可富集更多毛螺菌科、双歧杆菌等共生有益菌,菌群组成与单独 ART 存在明显分群。

Figure 5

图5.SIV感染后接受10-HSA治疗后的肠道微生物组恢复

6.PPARα通过诱导组蛋白H3K18巴豆酰化调控肠道上皮再生

HIV 抗原下调 H3K18 巴豆酰化水平,10-HSA 可逆转该变化, PPARα 敲除细胞中 10-HSA 无法提升巴豆酰化修饰 ;RT-qPCR 证实 PPARα 调控 ACOX1、ECHS1 等巴豆酰辅酶 A 合成酶,10-HSA 通过上调上述酶提升细胞巴豆酰-CoA 底物库;ChIP-seq 结果显示 10-HSA 诱导的组蛋白巴豆酰化特异性富集线粒体氧化磷酸化、钙离子转运相关基因,普通巴豆酸钠无靶向线粒体的修饰富集特征;体内组织染色结果显示,SIV 感染猴肠道 H3K18cr 修饰水平降低,10-HSA 或 ACT 处理后修饰显著回升,单一 ART 提升效果微弱。

Figure 6

图6.PPARα激活可通过宿主表观遗传重塑来促进线粒体能量代谢基因的表达

研究创新点

  • 理论创新: 首次建立 10-HSA-PPARα-组蛋白巴豆酰化调控轴,突破肠道代谢研究只关注短链脂肪酸的局限;阐明 ART 只能抑毒、无法修复肠道损伤的短板,区分乙酰化与巴豆酰化表观通路;临床样本证实该轴是人体天然肠道保护通路,具备转化潜力。
  • 技术创新: 整合晶体、分子动力学解析配体结合结构;搭建细胞-类器官-恒河猴-人体分层验证体系;联用多组学联动多维度表型;利用 PPARα 敲除细胞反向锁定靶点,完整支撑分子因果关系。

文章小结

HIV/SIV 感染会破坏肠道上皮、抑制 PPARα 信号、损伤线粒体功能,持续激活 NF-κB 诱发慢性炎症与病毒潜伏,标准 ART 无法逆转肠道黏膜损伤。本研究发现 植物乳杆菌来源代谢物 10-HSA 是 PPARα 天然特异性激动剂,通过线粒体修复、组蛋白巴豆酰化双重通路重建肠道屏障,同时抑制 NF-κB 依赖的炎症与潜伏病毒激活。 非人灵长类动物实验证实,10-HSA 联合 ART 的 ACT 方案可快速降低病毒载量、恢复黏膜 CD4⁺ T 细胞、重塑健康肠道菌群;人体活检样本证明 PPARα- 巴豆酰化通路在抵抗 HIV 肠道损伤中发挥天然保护作用。本研究定义新型菌群脂质治疗靶点,提出 “抗病毒药物 + 黏膜修复代谢物” 联合治疗新思路,为改善 HIV 慢性炎症、抑制病毒储存库、实现长效病毒沉默提供全新代谢干预方向。

源井生物提供的支持

源井生物为该研究提供体外机制验证核心工具 PPARA基因敲除细胞 (HCT 116)(#YKO-H592) ,助力构建“10-HSA→PPARα→线粒体/表观/屏障”完整因果链条,是本研究基因层面关键验证模型。

源井生物一直秉持“让基因编辑更简单”的核心理念,持续迭代产品与服务,已累计实现 13000+ 基因编辑成功案例,拥有 10000+ KO细胞产品,基于自主研发的创新技术,基因编辑效率最高可达 97% 。目前源井生物已为超10000个生命科学实验室、药企和CRO公司提供优质的基因编辑服务与产品。

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