精准点突变细胞系构建 — 四大方案详解

让基因编辑更简单
欢迎 : 退出
注册 | 登录
400-688-9033

当前位置:首页 > 技术专题 > 精准点突变细胞系构建 — 四大方案详解

首页 > 技术专题 > 精准点突变细胞系构建 — 四大方案详解

精准点突变细胞系构建 — 四大方案详解 | 源井生物为SNP研究保驾护航

发布日期:2025年05月26日
浏览量: --

精准点突变细胞系构建 — 四大方案详解 | 源井生物为SNP研究保驾护航

heading

随着高通量测序(NGS)技术的飞速发展,越来越多的人类单核苷酸多态性(SNP)与疾病发生密切相关。为了深入研究这些SNP相关疾病的发病机制及潜在治疗策略,构建具有特定位点突变的细胞模型成为基础研究的重要手段。 然而,点突变细胞系的构建技术门槛高、效率波动大,选择合适的策略往往可以起到事半功倍的效果。Ubigene生物基于多年基因编辑经验,提供四种高效策略,全面覆盖不同科研需求。点击了解详情>>

方法一:RNP法(Ribonucleoprotein Complex)

主流选择,流程灵活,适合多数贴壁细胞及常见SNP构建需求。

原理解析

将体外合成的gRNA与Cas9蛋白形成RNP复合物,并与单链寡核苷酸(ssODN)供体模板共转染入细胞。Cas9识别并切割目标位点,细胞利用ssODN通过HDR机制修复,完成碱基替换。

实验流程

1.设计高特异性gRNA:靶向突变点±20 bp区域

2.合成ssODN供体模板(约120–150nt)

3.RNP复合物与ssODN共转染(电转/脂质体)

4.PCR初筛 + Sanger测序验证

✅ 优势

1.无需DNA质粒载体,瞬时表达,脱靶风险低

2.流程简洁,适用于多数细胞类型

3.sgRNA设计灵活,成本较低

局限性

1.RNA易降解,对操作要求较高

2.依赖靶点附近可设计有效gRNA,否则效率低

3.不适用于难转染细胞或低HDR背景细胞

方法二:Prime Editing(精密编辑技术)

新一代CRISPR衍生工具,无需双链断裂或供体模板,可实现碱基转换、插入、缺失等复杂编辑

原理解析

Prime Editing使用融合蛋白 Prime Editor(Cas9-nickase + 逆转录酶)与特殊pegRNA,通过引导逆转录反应,将包含突变信息的“模板”直接写入DNA中,精准完成碱基替换或小片段变异。

实验流程

1.设计pegRNA(含引导序列、逆转录模板、PBS区)

2.共转染Prime Editor表达载体 + pegRNA表达载体

3.通常采用质粒转染(电转/脂质体)

4.通过测序进行筛选和验证

✅ 优势

1.可实现所有类型点突变,包括非转换型突变(如C→G、A→T)

2.不依赖双链断裂,减少indel与脱靶事件

3.灵活度高,适用于突变修复、功能验证

局限性

1.技术门槛较高,pegRNA设计复杂

2.编辑效率整体低于碱基编辑

3.编辑效率对目标序列结构敏感

4.尚不适用于所有细胞类型(部分细胞转染效率低)

方法三:Base Editing(碱基编辑)

无断裂、无供体、效率极高,适合特定类型碱基替换

原理解析

利用融合脱氨酶(如APOBEC或TadA)与Cas9-nickase的碱基编辑器系统,实现靶向位点特定碱基直接转化,无需双链断裂或HDR参与:

· CBE:C→T / G→A

· ABE:A→G / T→C

实验流程

1.设计gRNA(使目标突变位于编辑窗口内)

2.转染碱基编辑系统(质粒或病毒)

3.通常采用脂质体、电转等转染方式

4.PCR初筛后,需测序确认编辑成功与否

✅ 优势

1.编辑效率极高,无DSB引起的细胞毒性或indel问题

2.对编辑安全性要求高的场景尤为适用(如突变校正)

3.在动植物细胞中均已广泛验证

局限性

1.编辑碱基类型受限,仅适用于特定转换型突变

2.编辑窗口较小,存在“旁观突变”风险

3.不能编辑存在多个同碱基的窗口位点

方法四:质粒抗性筛选法(Antibiotics-based Knock-In)

适用于无法通过RNP或BE设计gRNA的复杂突变位点

原理解析

利用表达gRNA和Cas9的质粒 + 携带同源臂和抗性基因盒的供体质粒,实现HDR。供体中抗性基因通常嵌入内含子,由LoxP位点包裹,后期可通过Cre去除。通过抗生素筛选,大幅提升阳性克隆概率。

实验流程

1.在目标基因内含子区域设计gRNA,设计左右同源臂(600–1000bp)

2.共转染gRNA/Cas9质粒 + Donor质粒

3.抗生素筛选阳性克隆,再转染Cre表达质粒去除抗性盒

4.PCR初筛 + 测序验证

✅ 优势

1.筛选效率高,适用于低HDR背景细胞

2.不依赖近端PAM位点设计,gRNA更灵活

3.可构建复杂/低频点突变模型

局限性

1.实验周期长,操作流程复杂

2.抗性盒移除后仍残留LoxP痕迹

3.不适用于不耐受抗生素的细胞系

技术加持:Ubigene EZ-HRex™ 新一代HDR增强系统

Ubigene基于CRISPR-U™平台,升级开发出具有自主知识产权的EZ-HRex™技术,通过创新引入U+小分子调控因子,抑制NHEJ途径,增强HDR修复效率,广泛适用于点突变及片段敲入模型构建。

· HDR效率在多数细胞中 提升至高达84%+

· 适配所有四种构建方法

· 显著降低背景indel,提升克隆纯度

· 适合大规模突变模型构建/药筛/功能验证平台

源井ez-hrex新技术
源井EZ-HRex™新技术

点击了解EZ-HRex™技术详情>>

四种策略对比概览


方法 是否DSB 是否供体 是否需筛选 可编辑类型 编辑效率 优势特点
RNP法 ✅ 是 ✅ ssODN 简单替换 ★★★★☆ 灵活、快速、低毒性
Prime Editing ❌ 否 ❌ 无 插入、删除、任意突变 ★★☆☆☆ 精准广谱,技术新
Base Editing ❌ 否 ❌ 无 A↔G, C↔T型 ★★★★★ 无断裂,效率最高
质粒抗性法 ✅ 是 ✅ 质粒 ✅ 抗生素筛选 难构建突变 ★★★★☆ 筛选增强,适用复杂设计

应用建议


应用类型 推荐方案
常规点突变(如SNP) RNP 或 Base Editing
碱基替换无法覆盖的突变(如插入/删除) Prime Editing
靶点无合适gRNA或效率低 抗性筛选法
难转染/低HDR细胞(如悬浮系) 搭配AAV或EZ-HRex系统

Ubigene 点突变细胞模型定制服务

300+成功案例,四大技术路径,全面覆盖多类型突变需求

· 丰富经验:已成功构建 300余种点突变细胞模型,涵盖常见肿瘤相关突变、药物靶点突变、遗传病模型等

· 技术多元:整合 RNP法、Prime Editing、Base Editing、质粒抗性法 四大策略,灵活应对不同类型点突变(碱基转换、插入、删除、非标准替换等)

· 模型覆盖广泛:适用于贴壁系、悬浮系、干细胞、癌细胞等多种细胞类型

· 高效率高纯度:结合Ubigene专有 EZ-HRex™ HDR增强系统,大幅提升编辑效率与克隆效率

无论是精准替换、复杂突变,还是低编辑背景细胞,源井生物都能为您量身定制最优策略。

欢迎咨询源井生物,获取您的个性化方案设计>>

相关产品推荐

相关服务推荐

源井生物基因点突变细胞系通过核转染法将gRNA载体(含Cas9)和Donor共转入细胞中,gRNA和Cas9复合物造成靶位点DNA双链断裂后,细胞以外源携带目标点突变的Donor作为模板进行同源重组修复(HDR),将目标点突变重组到基因组靶位点。
联系我们
×